ATCC细胞单纯的固定液一般难以达到这些要求

　　ATCC细胞单纯的固定液一般难以达到这些要求，因此在实验中使用两种混和的固定液。由于Carnoy首先使用的甲醇和冰乙酸混合液而称的卡诺氏固定液是效果良好的固定液。Carnoy固定液（甲醇:冰乙酸=3:l）每次使用前需临时配制，长时间放置影响固定效果，固定时间15分钟至24小时，冰箱、室温均可。ATCC细胞必要时可改变甲醇和冰乙酸的比例，冰乙酸比例增加，利于细胞膨胀、染色体铺展，但易导致细胞破裂、染色体散失。

　　ATCC细胞材料和试剂:

　　1、细胞：贴壁细胞株。

　　2、试剂：0.25％胰酶、1640培养基（含10％小牛血清）。

　　3、仪器和器材：倒置显微镜，培养箱、培养瓶、吸管、废液缸等。

　　ATCC细胞操作步骤:

　　1、将长满细胞的培养瓶中原来的培养液弃去。　　　　
2、加入0.5―1ml0.25％胰酶溶液，使瓶底细胞都浸入溶液中。

　　3、瓶口塞好橡皮塞，放在倒置镜下观察细胞。随着时间的推移，原贴壁的细胞逐渐趋于圆形，在还未漂起时将胰酶弃去，加入10ml培养液终止消化。观察消化也可以用肉眼，当见到瓶底发白并出现细针孔空隙时终止消化。一般室温消化时间约为1―3分钟。

　　4、用吸管将贴壁的细胞吹打成悬液，分到另外两到三瓶中，实践培养液塞好橡皮塞，置37℃下继续培养。第二天观察贴壁生长情况。　　　　附：消化液配制方法：　　称取0.25克胰酶蛋白酶（活力为1：250），加入100ml无Ca2+、Mg2+的Hank’s液溶解，滤器过滤除菌，4℃保存，用前可在37℃下回温。胰酶溶液中也可加入EDTA，使zui终浓度达0.02％。

　　ATCC细胞在培养中使用的纺锤体阻断剂为秋水仙素，在终止培养前加入适量秋水仙素，使正在分裂的细胞停留在中期，以获得大量分裂相供分析之用。秋水仙素的浓度范围比较宽，一般使用浓度0.05—0.8微克/毫升，在终止培养前处理2—4小时。但在实际工作中需要借助浓度和处理时间来控制染色体的收缩程度。秋水仙素作用时间越长，被阻断的中期分裂相越多，但是ATCC细胞染色体也越凝聚和收缩，所以还视各实验室经验而定。

 

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